BioSphère Santé
24/01/2026
Termes médicaux
Informations pratiques pour l'analyse microscopique des urines
Voici les détails de cette manipulation :
1. La zone de travail (Le "Cône de Stérilité")
Le bec Bunsen n'est pas là uniquement pour stériliser des instruments. En brûlant, il crée un courant d'air ascendant.
Rayon d'action : Cela crée une zone stérile d'environ 20 cm de rayon autour de la flamme.
Objectif : Toute manipulation (ouvrir la boîte de Petri, manipuler l'écouvillon) doit se faire impérativement dans ce périmètre pour éviter que des bactéries présentes dans l'air ne contaminent la culture.
2. La technique de l'écouvillonnage
Dans l'image, la personne utilise un écouvillon. Cette méthode est souvent utilisée pour réaliser un tapis bactérien (un ensemencement dense et uniforme) :
On trempe l'écouvillon dans une suspension bactérienne.
On frotte toute la surface de la gélose en tournant la boîte de 60° à chaque passage pour ne laisser aucun espace vide.
L'application : C'est l'étape préliminaire pour un antibiogramme. Une fois le "tapis" fait, on dépose des disques d'antibiotiques pour voir lesquels empêchent les bactéries de pousser.
3. Les étapes clés de la manipulation
Si vous deviez reproduire ce geste, voici le protocole strict :
Stérilisation : Allumer le bec Bunsen et désinfecter le plan de travail.
Identification : Noter sur le bord de la boîte (côté gélose) le nom de l'échantillon et la date.
Inoculation : Ouvrir légèrement le couvercle de la boîte (toujours près de la flamme) et passer l'écouvillon.
Incubation : Placer la boîte à l'envers (couvercle en bas) dans une étuve, généralement à 37°C, pour permettre la croissance.
Le saviez-vous ?
On place toujours les boîtes à l'envers dans l'étuve pour éviter que la condensation qui se forme sur le couvercle ne retombe sur la gélose, ce qui ferait "baver" les colonies et rendrait l'examen impossible.
03/01/2026
Test de Compatibilité (Compatibility Test)
LISS Coombs, NaCl ou Enzyme
1. Étiquetage : Étiqueter la carte avec l'identifiant (ID) du patient et du donneur, puis retirer l'opercule.
2. Suspension cellulaire : Préparer des suspensions de globules rouges à 0,8 % pour le patient et le donneur (1,0 ml de diluant 2 + 20 µl de sang ou 10 µl de concentré de globules rouges).
3. Distribution des cellules :
Ajouter 50 µl de chaque cellule de donneur dans un microtube (1-5).
Ajouter 50 µl de cellules du receveur dans le tube suivant disponible (Auto-témoin / Auto control).
Ajouter 25 µl de plasma ou de sérum du receveur dans chaque tube.
3a. Test enzymatique : Pour les tests enzymatiques, ajouter 25 µl de diluant 1 (Broméline) dans chaque tube.
4. Incubation : Incuber pendant 15 minutes à 37°C.
5. Centrifugation : Centrifuger la carte dans une centrifugeuse ID.
6. Interprétation : Interpréter les résultats.
Note importante : Les groupes sanguins du donneur et du receveur doivent également être confirmés pour vérifier la compatibilité.
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